Information

PCR og storskala PCR

PCR og storskala PCR



We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Jeg har udført PCR med 50 μL, som viste et klart bånd i gelelektroforesen. Jeg udførte derefter storskala PCR med 3650 μL, som viste et uklart bånd i gelelektroforesen. Hvad kan være årsagen til dette? Kan det være plasmidtab, selvom der er et bånd, bare et meget uklart? Det skal nævnes, at den enkelte PCR blev udført om sommeren, og den store skala blev udført nu


Jeg lavede storskalaen i et falkerør og flyttede derefter blandingen til PCR-rør, der hver indeholdt 50 μL, så PCR-betingelserne skulle være de samme som den enkelte PCR-amplifikation

Hvis alle reagenskoncentrationer og cyklusbetingelser er de samme, formoder jeg, at du ikke har blandet din store mængde reaktion tilstrækkeligt før dispensering som 50 μL alikvoter.

Det skal nævnes, at den enkelte PCR blev udført om sommeren, og den store skala blev udført nu

Hvis du brugte de samme polymerase- og primer-bestanddele til små- og store-volumen-reaktioner, blev lagrene korrekt opbevaret i mellemtiden? Rekombinante DNA-polymeraser i glycerolbuffere har en holdbarhed på måneder til år afhængigt af leverandørens specifikationer og opbevaringsbetingelser, selvom du bør forvente en vis nedsat aktivitet efter flere måneder.


Sammenlignende vurdering af et kommercielt sæt og to laboratorieudviklede PCR-assays til molekylær diagnose af medfødt toxoplasmose

Toxoplasmose er en verdensomspændende infektion, der kan forårsage alvorlig sygdom og betragtes som et alvorligt sundhedsproblem i Frankrig. Påvisning af parasitten ved molekylære metoder er afgørende for diagnosticering af sygdommen. Den ekstreme mangfoldighed af metoder og ydelser af Toxoplasma PCR-assays gør brugen af ​​kommercielle PCR-kits til et attraktivt alternativ, da de giver mulighed for standardisering. Vi sammenlignede ydeevnen af ​​tre molekylære metoder til påvisning af Toxoplasma gondii DNA i fostervand: en kommerciel metode ved brug af indlejret PCR og to laboratorieudviklede metoder, den ene ved hjælp af konventionel PCR og den anden en real-time PCR. Denne evaluering var baseret på en T. gondii DNA seriel fortyndingsanalyse, tre fostervandsprøver tilsat T. gondii i forskellige koncentrationer og en klinisk kohorte på 33 fostervandsprøver. T. gondii DNA-seriefortyndingsanalysen viste en meget lavere følsomhed for det kommercielle kit end for de laboratorieudviklede metoder. Ud af 12 påviste tilfælde af medfødt toxoplasmose blev 91,7 % desuden påvist af laboratorieudviklede assays, hvorimod kun 50 % blev påvist af det kommercielle kit. Metodens manglende følsomhed, delvis på grund af tilstedeværelsen af ​​PCR-hæmmere, var den største ulempe ved den kommercielle metode. Denne undersøgelse understreger, at kommercielle PCR-diagnostiksæt ikke systematisk yder bedre end nøje optimerede laboratorieudviklede metoder. Der er behov for en grundig evaluering af sådanne kits af dygtige grupper, såvel som for ydeevnestandarder, som kommercielle kits kan testes i forhold til for at forbedre tilliden til dem, der er udvalgt af sundhedsudbydere.


Adgangsmuligheder

Få fuld journaladgang i 1 år

Alle priser er NETTOpriser.
Moms tillægges senere i kassen.
Skatteberegningen vil blive afsluttet ved kassen.

Få tidsbegrænset eller fuld artikeladgang på ReadCube.

Alle priser er NETTOpriser.


PCR Biosystems udvikler og fremstiller PCR-kits og reagenser til molekylærbiologisk forskning og diagnostik. Efter mere end 20 års erfaring inden for branchen lancerede medstifterne Mark Stevens og Alex Wilson virksomheden i 2012 med det formål at gøre tingene anderledes. Fokus har været skabelsen af ​​højtydende PCR-reagenser, der forenkler kundernes forskning, og præcisionskomponenter til at støtte partnere med deres udvikling af diagnostiske assays.

Nu, ni år efter, har PCR Biosystems en portefølje af reagenser udviklet ved hjælp af proprietære assays og smart screen-teknologi, der dækker et bredt spektrum af PCR-applikationer. Det er vigtigt, at PCR Biosystems også opererer under et ISO 13485:2016 certificeret kvalitetsstyringssystem, hvilket betyder, at produkterne og processerne opfylder de internationale standarder for fremstilling af komponenter til medicinsk udstyr.

Under pandemien har fokus været meget på PCR. Fortæl os om dit nye produkt qPCRBIO Probe 1-Step Virus Detect, hvordan dets lancering skete, og hvad det kan bruges til.

Alex: "qPCRBIO Probe 1-Step Virus Detect blev lanceret tidligt i pandemien, specifikt for at understøtte high-throughput test for SARS-CoV-2 (virussen ansvarlig for COVID-19). Dette produkt er et højkoncentreret 4x RT-qPCR-kit designet til hurtig og nøjagtig påvisning af virale RNA-sekvenser. Det eneste, der kræves, er tilsætning af specifikke primere og prober sammen med vatpindekstraktet og vand. En vigtig fordel for brugerne er evnen til at tilføje flere prøver til deres reaktioner for at øge analytisk følsomhed, selv når der arbejdes med små mængder reaktioner.

Ved at udvikle qPCRBIO Probe 1-Step Virus Detect sigter vi mod at tilbyde forskere og producenter af diagnostiske kits fleksibilitet i deres analyseudvikling og ultimativ tillid til kvaliteten og nøjagtigheden af ​​de genererede resultater."

Hvordan har PCR Biosystems ellers hjulpet med at støtte kampen mod COVID-19?

Alex: "Som du kan forestille dig, gik efterspørgslen efter hurtige og pålidelige reagenser gennem taget, da krisens alvor ramte. Udover qPCRBIO Probe 1-Step Virus Detect inkluderede vores præ-pandemiske portefølje allerede en række produkter, der kunne bruges til COVID-19-test, og vi opskalerede straks produktionen af ​​disse kritiske reagenser.

For at understøtte test i massiv skala introducerede vi bulkpakningsstørrelser af vores nøgleprodukter, hvilket sikrer ensartethed, bekvemmelighed og værdi for high-throughput test af kliniske prøver. Derudover validerede vi vores qPCRBIO Probe 1-Step-område til kvalitativ påvisning af SARS-CoV-2-nukleinsyre ved hjælp af Charité, Berlin og CDC anbefalede primer-probe sekvenser (RdRp, E og N gener). At støtte kunder med teknisk ekspertise inden for analyseudvikling og opskalering har været et andet centralt fokus for vores team gennem det seneste år.

Midt i en pandemi begyndte vi at levere vores skræddersyede Riboshield™ RNase-hæmmer som et uafhængigt produkt. Dette reagens beskytter RNA og kan stabilisere RNA-mål såsom SARS-CoV-2 i prøver, og derved sikre pålidelige diagnostiske resultater.

Senest har vi lanceret IsoFast™ Bst 1-Step Mix, der giver en alternativ metode til PCR til amplifikation og analyse af viralt RNA. Bst-polymerase eliminerer gennem sin nukleinsyrestrengsforskydningsevne behovet for højtemperaturdenatureringstrinet forbundet med traditionelle Taq-enzymer. Dette muliggør hurtigere resultater og letter billig detektering i marken uden specialiseret termocyklisk udstyr."

Mens mange forsyningskæder er blevet forstyrret på grund af pandemien, hvordan er PCR Biosystems så blevet ved med at opskalere og optimere driften for at sikre fortsat forsyning?

Alex: "Siden pandemiens udbrud har vi været forpligtet til at sikre, at forskere og organisationer på alle markeder kan få adgang til de PCR-produkter og -tjenester, de har brug for. At være agile og hurtige til at reagere har været medvirkende til vores evne til at imødekomme enhver reagensordre modtaget i løbet af denne tid – noget jeg er utrolig stolt af.

Takket være vores beredskabsplanlægning implementerede vi øjeblikkeligt skiftbaseret arbejde til produktion, montage og ordreafvikling og havde tre løsrevne teams, der arbejdede syv dage om ugen, med to fuldt uddannede kommercielle teams i reserve til at yde operationel support.

Vi øgede massivt fremstillingen af ​​RT-qPCR-reagenser og styrede vores kunder mod bulkformater, idet vi erkendte den overhængende mangel på plastikvarer. At have et fremragende forhold til leverandører har været afgørende, og opskalering af ikke kun vores forretning, men også vores kritiske leverandørers et vigtigt skridt i denne proces.

Med vores udvidede produktionsfaciliteter, store lagerbeholdninger, kapacitet til yderligere opskalering og en stor stigning i vores team af PCR-eksperter, har vi været i stand til at opfylde vores forpligtelse om en uafbrudt forsyning af reagenser, og vi er godt rustet til at tackle evt. fremtidig stigning i efterspørgslen."

Hvad byder fremtiden på for PCR Biosystems?

Alex: "Vi er ambitiøse med vores fremtidsplaner - investerer massivt i vores forsknings- og udviklingsaktiviteter og driver en stor produktudviklingspipeline fremad. Den langsigtede vision, både for den nuværende pandemi og efter, er at lette adgangen til diagnostiske og molekylære reagenser, der tilbyder stabilitet og pålidelighed, især til behandlingssteder. Til dette formål lancerer vi snart en Lyo-Ready serie af PCR-reagenser. Disse produkter kan lyofiliseres - en proces med nedtørring til fast form, hvilket gør forsendelse og opbevaring lettere, forlænger produktets levetid og giver større fleksibilitet i prøvevolumen.

Vi vil også fortsætte med at udvide vores distributionspartnerskaber og diagnostiske samarbejder, efterhånden som vi bevæger os gennem 2021 og derefter. I kampen om COVID-19-testreagenser ved vi, at nogle regioner var mindre i stand til at sikre de nødvendige materialer fra deres leverandører. Vi har haft stor gavn af et meget erfarent distributørnetværk, der støtter kunder med deres reagensbehov i 39 lande. Vores forpligtelse til at forsyne globale sundhedssystemer med de nødvendige produkter og ekspertise vil forblive stærk i fremtiden for PCR Biosystems."

For mere information, kontakt det britiske hovedkvarter på +44 (0) 20 3930 8101, e-mail [email protected] eller besøg www.pcrbio.com

Bemærk venligst: Dette er en kommerciel profil

© 2019. Dette værk er licenseret under en CC BY 4.0-licens.


Forespørgselsbaserede eksperimenter til storskala introduktion til PCR og restriktionsenzymfordøjelser

Adresse for korrespondance til: Department of Chemistry, Xavier University of Louisiana, 1 Drexel. Dr, New Orleans, LA 70125, USA. E-mail: [email protected] [email protected] .Søg efter flere artikler af denne forfatter

Institut for Kemi, Xavier University of Louisiana, 1 Drexel. Dr, New Orleans, Louisiana, 70125

KEJ og TJW ​​bidrog lige så meget til dette arbejde.

Adresse for korrespondance til: Department of Chemistry, Xavier University of Louisiana, 1 Drexel. Dr, New Orleans, LA 70125, USA. E-mail: [email protected] [email protected] .Søg efter flere artikler af denne forfatter

Institut for Kemi, Xavier University of Louisiana, 1 Drexel. Dr, New Orleans, Louisiana, 70125

KEJ og TJW ​​bidrog lige så meget til dette arbejde.

Adresse for korrespondance til: Department of Chemistry, Xavier University of Louisiana, 1 Drexel. Dr, New Orleans, LA 70125, USA. E-mail: [email protected] [email protected] .Søg efter flere artikler af denne forfatter

Institut for Kemi, Xavier University of Louisiana, 1 Drexel. Dr, New Orleans, Louisiana, 70125

KEJ og TJW ​​bidrog lige så meget til dette arbejde.

Adresse for korrespondance til: Department of Chemistry, Xavier University of Louisiana, 1 Drexel. Dr, New Orleans, LA 70125, USA. E-mail: [email protected] [email protected] .Søg efter flere artikler af denne forfatter

Abstrakt

Polymerasekædereaktion og restriktionsendonukleasefordøjelse er vigtige teknikker, der bør inkluderes i alle biokemi og molekylærbiologi laboratoriepensum. Disse teknikker undervises ofte på et avanceret niveau, hvilket kræver mange timers studerende og fakultetets tid. Her præsenterer vi to undersøgelsesbaserede eksperimenter, der er designet til indledende laboratoriekurser og kombinerer begge teknikker. I begge tilgange skal eleverne bestemme identiteten af ​​en ukendt DNA-sekvens, enten en gensekvens eller en primersekvens, baseret på en kombination af PCR-produktstørrelse og restriktionsfordøjelsesmønster. Det eksperimentelle design er fleksibelt og kan tilpasses baseret på tilgængelig instruktørforberedelsestid og ressourcer, og begge tilgange kan rumme et stort antal elever. Vi implementerede disse eksperimenter i vores kurser med i alt 584 studerende og har en succesrate på 85%. Samlet set viste eleverne en stigning i deres forståelse af de eksperimentelle emner, evne til at fortolke de resulterende data og færdigheder i generelle laboratoriefærdigheder. © 2015 af The International Union of Biochemistry and Molecular Biology, 43:441–448, 2015.

Yderligere understøttende oplysninger kan findes i onlineversionen af ​​denne artikel.

Bemærk venligst: Udgiveren er ikke ansvarlig for indholdet eller funktionaliteten af ​​nogen understøttende information leveret af forfatterne. Alle forespørgsler (bortset fra manglende indhold) skal rettes til den tilsvarende forfatter til artiklen.


Storskala realtids-PCR-validering på genekspressionsmålinger fra to kommercielle lange oligonukleotidmikroarrays

Baggrund: DNA-mikroarrays er hurtigt ved at blive et grundlæggende værktøj i opdagelsesbaseret genomisk og biomedicinsk forskning. Pålideligheden af ​​mikroarray-resultaterne bliver imidlertid udfordret på grund af eksistensen af ​​forskellige teknologier og ikke-standardiserede metoder til dataanalyse og fortolkning. I mangel af en "guldstandard"/"referencemetode" til genekspressionsmålingerne har undersøgelser, der evaluerer og sammenligner ydeevnen af ​​forskellige mikroarray-platforme, ofte givet subjektive og modstridende konklusioner. For at løse dette problem har vi udført et TaqMan-genekspressionsassay-baseret realtids-PCR-eksperiment i stor skala og brugt dette datasæt som reference til at evaluere ydeevnen af ​​to repræsentative kommercielle mikroarray-platforme.

Resultater: I denne undersøgelse analyserede vi genekspressionsprofilerne for tre humane væv: hjerne, lunge, lever og en universel human referenceprøve (UHR) ved hjælp af to repræsentative kommercielle langoligonukleotid-mikroarray-platforme: (1) Applied Biosystems Human Genome Survey Microarrays (baseret på enkeltfarvedetektering) (2) Agilent Whole Human Genome Oligo Microarrays (baseret på tofarvet detektion). 1.375 gener repræsenteret af begge mikroarray-platforme og spænder over et bredt dynamisk område i genekspressionsniveauer, blev udvalgt til TaqMan Gene Expression Assay-baseret real-time PCR-validering. For hver platform blev fire tekniske replikater udført på de samme samlede RNA-prøver i henhold til hver producents standardprotokoller. For Agilent arrays blev sammenlignende hybridisering udført under anvendelse af inkorporering af Cy5 for hjerne/lunge/lever RNA og Cy3 for UHR RNA (fælles reference). Ved at bruge det TaqMan-genekspressionsassay-baserede realtids-PCR-datasæt som referencesættet, blev ydeevnen af ​​de to mikroarray-platforme evalueret med fokus på følgende kriterier: (1) Følsomhed og nøjagtighed ved påvisning af ekspression (2) Fold-ændringskorrelation med real-time PCR-data i parvise væv såvel som i genekspressionsprofiler bestemt på tværs af alle væv (3) Sensitivitet og nøjagtighed ved påvisning af differentiel ekspression.

Konklusion: Vores undersøgelse giver et af de største "reference" datasæt af genekspressionsmålinger ved hjælp af TaqMan Gene Expression Assay baseret real-time PCR-teknologi. Dette datasæt gjorde det muligt for os at bruge en alternativ genekspressionsteknologi til at evaluere ydeevnen af ​​forskellige mikroarray-platforme. Vi konkluderer, at mikroarrays faktisk er uvurderlige opdagelsesværktøjer med acceptabel pålidelighed til genom-dækkende genekspressionsscreening, selvom validering af formodede ændringer i genekspression fortsat er tilrådelig. Vores undersøgelse karakteriserer også begrænsningerne ved mikroarrays. Forståelse af disse begrænsninger vil gøre det muligt for forskere mere effektivt at evaluere mikroarray-resultater på en mere forsigtig og passende måde.


PCR-reagenser og enzymer

Lær om PCR-historien, opsætningsovervejelser, vigtigheden af ​​DNA-polymerasevalg, almindelige metoder og applikationer og fejlfinding.


Anerkendelser

Vi takker A. Boehm for at give indsigt og laboratoriestøtte hos Stanford R. Martone og L. Sassoubre for nyttige samtaler om eksperimentelt design Ofelia C. Romero-Maraccini, M. Mattioli og D. Lee for teknisk support O. Shelton, J. Samhouri , G. Williams, S. Hennessey, A. Stier, B. Feist og P. Levin for relaterede analytiske diskussioner og feltstøtte R. Morris og V. Armbrust til indsigt og laboratoriestøtte på UW og Helen R. Whiteley Center kl. Friday Harbor Laboratories for at støtte det skriveværksted, der i væsentlig grad fremmede dette produkt. Dette arbejde blev støttet af et tilskud fra David og Lucile Packard Foundation.


Hvordan sikrer en high-fidelity polymerase, at den korrekte base indsættes?

High-fidelity DNA-polymeraser har adskillige sikkerhedsforanstaltninger for at beskytte mod både at lave og udbrede fejl, mens de kopierer DNA. Sådanne enzymer har en signifikant bindingspræference for det korrekte versus det ukorrekte nukleosidtrifosfat under polymerisation. Hvis et ukorrekt nukleotid binder i det polymerase-aktive sted, bremses inkorporeringen på grund af den sub-optimale arkitektur af det aktive sted-kompleks. Denne forsinkelsestid øger muligheden for, at det forkerte nukleotid kan dissociere før polymeraseprogression, hvorved processen kan starte igen med et korrekt nukleosidtrifosfat (1,2). Hvis et forkert nukleotid indsættes, har korrekturlæsende DNA-polymeraser en ekstra forsvarslinje (figur 1). Forstyrrelsen forårsaget af de fejlparrede baser detekteres, og polymerasen flytter den 3&akutte ende af den voksende DNA-kæde ind i et korrekturlæsende 3´&rarr5&akut exonukleasedomæne. Der fjernes det forkerte nukleotid af 3´&rarr5´ exonuclease-aktiviteten, hvorefter kæden flyttes tilbage i polymerasedomænet, hvor polymeriseringen kan fortsætte.


Referencer

Hackett JL, Lesko LJ: Microarray-data - den amerikanske FDA, industrien og den akademiske verden. Nat Biotechnol. 2003, 21 (7): 742-743. 10.1038/nbt0703-742.

Petricoin EF, Hackett JL, Lesko LJ, Puri RK, Gutman SI, Chumakov K, Woodcock J, Feigal DWJ, Zoon KC, Sistare FD: Medicinske anvendelser af mikroarray-teknologier: et regulatorisk videnskabsperspektiv. Nat Genet. 2002, 32 Suppl: 474-479. 10,1038/ng1029.

Ramaswamy S: Oversættelse af cancergenomik til klinisk onkologi. N Engl J Med. 2004, 350 (18): 1814-1816. 10.1056/NEJMp048059.

Shi L, Tong W, Goodsaid F, Frueh FW, Fang H, Han T, Fuscoe JC, Casciano DA: QA/QC: udfordringer og faldgruber, som mikroarray-samfundet og regulatoriske agenturer står over for. Ekspert Rev Mol Diagn. 2004, 4 (6): 761-777. 10.1586/14737159.4.6.761.

Irizarry RA, Warren D, Spencer F, Kim IF, Biswal S, Frank BC, Gabrielson E, Garcia JG, Geoghegan J, Germino G, Griffin C, Hilmer SC, Hoffman E, Jedlicka AE, Kawasaki E, Martinez-Murillo F, Morsberger L, Lee H, Petersen D, Quackenbush J, Scott A, Wilson M, Yang Y, Ye SQ, Yu W: Sammenligning af flere laboratorier af mikroarray-platforme. Nat Metoder. 2005, 2 (5): 345-350. 10,1038/nmeth756.

Larkin JE, Frank BC, Gavras H, Sultana R, Quackenbush J: Uafhængighed og reproducerbarhed på tværs af mikroarray-platforme. Nat Metoder. 2005, 2 (5): 337-344. 10,1038/nmeth757.

Rogojina AT, Orr WE, Song BK, Geisert EEJ: Sammenligning af brugen af ​​Affymetrix med plettede oligonukleotidmikroarrays ved hjælp af to retinale pigmentepitelcellelinjer. Mol Vis. 2003, 9: 482-496.

Shi L, Tong W, Fang H, Scherf U, Han J, Puri RK, Frueh FW, Goodsaid FM, Guo L, Su Z, Han T, Fuscoe JC, Xu ZA, Patterson TA, Hong H, Xie Q, Perkins RG , Chen JJ, Casciano DA: Sammenlignelighed på tværs af platforme af mikroarray-teknologi: Konsistens mellem platforme og passende dataanalyseprocedurer er afgørende. BMC Bioinformatik. 2005, 6 Suppl 2: S12-10.1186/1471-2105-6-S2-S12.

Shippy R, Sendera TJ, Lockner R, Palaniappan C, Kaysser-Kranich T, Watts G, Alsobrook J: Ydeevneevaluering af kommercielle kort-oligonukleotid-mikroarrays og støjens indvirkning ved at lave cross-platform korrelationer. BMC Genomics. 2004, 5 (1): 61-10.1186/1471-2164-5-61.

Tan PK, Downey TJ, Spitznagel ELJ, Xu P, Fu D, Dimitrov DS, Lempicki RA, Raaka BM, Cam MC: Evaluering af genekspressionsmålinger fra kommercielle mikroarray-platforme. Nucleic Acids Res. 2003, 31 (19): 5676-5684. 10.1093/nar/gkg763.

Yauk CL, Berndt ML, Williams A, Douglas GR: Omfattende sammenligning af seks mikroarray-teknologier. Nucleic Acids Res. 2004, 32 (15): e124-10.1093/nar/gnh123.

Mackay IM, Arden KE, Nitsche A: Real-time PCR i virologi. Nucleic Acids Res. 2002, 30 (6): 1292-1305. 10.1093/nar/30.6.1292.

Wong ML, Medrano JF: Real-time PCR til mRNA kvantificering. Bioteknikker. 2005, 39 (1): 75-85.

Arya M, Shergill IS, Williamson M, Gommersall L, Arya N, Patel HR: Grundlæggende principper for kvantitativ PCR i realtid. Ekspert Rev Mol Diagn. 2005, 5 (2): 209-219. 10.1586/14737159.5.2.209.

Wilhelm J, Pingoud A: Polymerasekædereaktion i realtid. Chembiochem. 2003, 4 (11): 1120-1128. 10.1002/cbic.200300662.

Pietrzyk MC, Banas B, Wolf K, Rummele P, Woenckhaus M, Hoffmann U, Kramer BK, Fischereder M: Kvantitativ genekspressionsanalyse af fraktalkin ved hjælp af lasermikrodissektion i biopsier fra nyre-allografter med akut afstødning. Transplantation Proc. 2004, 36 (9): 2659-2661. 10.1016/j.transproceed.2004.09.029.

de Kok JB, Roelofs RW, Giesendorf BA, Pennings JL, Waas ET, Feuth T, Swinkels DW, Span PN: Normalisering af genekspressionsmålinger i tumorvæv: sammenligning af 13 endogene kontrolgener. Lab Invest. 2005, 85 (1): 154-159.

Hughes TR, Mao M, Jones AR, Burchard J, Marton MJ, Shannon KW, Lefkowitz SM, Ziman M, Schelter JM, Meyer MR, Kobayashi S, Davis C, Dai H, He YD, Stephaniants SB, Cavet G, Walker WL , West A, Coffey E, Shoemaker DD, Stoughton R, Blanchard AP, Friend SH, Linsley PS: Ekspressionsprofilering ved hjælp af mikroarrays fremstillet af en ink-jet oligonukleotidsynthesizer. Nat Biotechnol. 2001, 19 (4): 342-347. 10.1038/86730.

Stefano GB, Burrill JD, Labur S, Blake J, Cadet P: Regulering af forskellige gener i humane leukocytter, der er akut udsat for morfin: ekspressionsmikroarrayanalyse. Med Sci Monit. 2005, 11 (5): MS35-42.

Zhao JR, Bai YJ, Zhang QH, Wan Y, Li D, Yan XJ: Påvisning af hepatitis B-virus-DNA ved realtids-PCR ved hjælp af TaqMan-MGB-probeteknologi. World J Gastroenterol. 2005, 11 (4): 508-510.

Yang DK, Kweon CH, Kim BH, Lim SI, Kim SH, Kwon JH, Han HR: TaqMan revers transkription polymerase kædereaktion til påvisning af japansk encephalitis virus. J Vet Sci. 2004, 5 (4): 345-351.

Rajagopalan D: En sammenligning af statistiske metoder til analyse af oligonukleotidarray-data med høj densitet. Bioinformatik. 2003, 19 (12): 1469-1476. 10.1093/bioinformatik/btg202.

Bolstad BM, Irizarry RA, Astrand M, Speed ​​TP: En sammenligning af normaliseringsmetoder for oligonukleotidarray-data med høj densitet baseret på varians og bias. Bioinformatik. 2003, 19 (2): 185-193. 10.1093/bioinformatik/19.2.185.

Smyth GK, Speed ​​T: Normalisering af cDNA-mikroarray-data. Metoder. 2003, 31 (4): 265-273. 10.1016/S1046-2023(03)00155-5.

Huber W, von Heydebreck A, Sultmann H, Poustka A, Vingron M: Variansstabilisering anvendt til mikroarray-datakalibrering og til kvantificering af differentielt udtryk. Bioinformatik. 2002, 18 Suppl 1: S96-104.

Fawcett T: ROC-grafer: Noter og praktiske overvejelser for forskere. Teknisk rapport HPL-2003-4, HP Laboratories. 2004, [http://home.comcast.net/

Chambers JM, Hastie TH: Statistiske modeller. 1992, S. Wadsworth & Brooks/Cole, Pacific Grove, Californien


Se videoen: ВАЖНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ ДЛЯ возвращающихся ИЗ-ЗА ГРАНИЦЫ в Россию от Роспотребнадзора, изучаем новую анкету (August 2022).